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Sistema QIAEX II

Para la purificación de fragmentos de ADN (entre 40 bp y 50 kb) a partir de geles y soluciones

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QIAEX II Gel Extraction Kit (150)

Cat. No. / ID:   20021

Para 150 extracciones: 3 suspensiones de 0,5 ml QIAEX II, tampones
3410,00 NOK
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Reactions
150
500
El Sistema QIAEX II está concebido para su uso en aplicaciones de biología molecular. Este producto no está concebido para el diagnóstico, la prevención ni el tratamiento de enfermedades.

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Features

  • Extracción eficiente de ADN de entre 40 bp y 50 kb
  • Extracción en gel a partir de geles de agarosa con TAE o TBE y geles de poliacrilamida
  • Sin yoduro de sodio que interfiera con las reacciones posteriores
  • Sin cizallamiento de fragmentos grandes de ADN

Product Details

El sistema QIAEX II incluye una suspensión de las partículas de sílice a las que los fragmentos de ADN se unen en presencia de sales caotrópicas. La suspensión QIAEX II se añade a soluciones o cortes de gel de agarosa solubilizada y une el ADN. Las partículas se recogen mediante una breve centrifugación, se lavan y el ADN de entre 40 bp y 50 kb se eluye en tampón Tris o agua.

Performance

Con el uso del sistema QIAEX II, se recupera el ADN de entre 10 ng y 10 µg de forma eficiente (consulte la figura  «Recuperación uniforme»). El versátil procedimiento para la purificación por lotes de los fragmentos en gel se puede escalar fácilmente a una capacidad de unión de 15 µg empleando 30 µl de suspensión QIAEX II.

El sistema QIAEX II incluye partículas de sílice para purificar fragmentos de ADN al 60–95 % (40 bp–50 kb). Un volumen de 10 µl de suspensión QIAEX II une hasta 5 µg de ADN, que posteriormente se eluye en 20 µl.

Recuperación según el tamaño

Tamaño de ADNRecuperación, porcentaje*
44 bp75
75 bp75
500 bp95
7,5 kb85
23,5 kb75
48,5 kb60
See figures

Principle

La purificación de los fragmentos de ADN con el sistema QIAEX II se basa en la solubilización de la agarosa y la adsorción selectiva de ácidos nucleicos en partículas de gel de sílice de QIAEX II en la presencia de sales caotrópicas. QIAEX II separa el ADN de las sales, la agarosa, la policrilamida, los colorantes, las proteínas y los nucleótidos sin extracción fenólica ni precipitación con etanol. QIAEX II es eficiente para cualquier tipo de agarosa en tampones con TAE o TBE.

Las partículas de QIAEX II proporcionan un residuo pastoso para la extracción en gel y garantizan una eficiente recuperación sin cizallamiento, incluso para fragmentos grandes de ADN. Los tampones optimizados permiten la recuperación de ADN sin yoduro de sodio, que es difícil de eliminar de las muestras de ADN y puede afectar las reacciones posteriores.

El tampón de unión y solubilización empleado con el sistema QIAEX II contiene un indicador único de pH. Con un simple cambio de color, se indica si el pH de la mezcla de unión es óptimo para la adsorción eficiente de ADN en las partículas de sílice de QIAEX II (consulte la figura  «Colorante indicador de pH»). El colorante también permite la fácil visualización de agarosas no solubilizadas en la mezcla de unión, lo que garantiza que se produzca una solubilización completa para tener un máximo rendimiento.

El colorante indicador de pH en el tampón de unión y solubilización también permite que la determinación visual del pH óptimo para la adsorción de ADN (pH ≤7,5) sea sencilla. Se puede producir un pH incorrecto de mezcla de unión si el tampón de electroforesis en gel de agarosa se ha utilizado de forma frecuente o se ha preparado de forma incorrecta. En este caso, el pH se pueden ajustar fácilmente con la adición de 10 µl de acetato de sodio 3 M, con pH de 5,0.

See figures

Procedure

Las partículas de gel de sílice de QIAEX II se añaden al corte de gel solubilizado y las partículas se recogen mediante el paso de centrifugación breve (consulte el diagrama de flujo  «Procedimiento de QIAEX II»). Tras el lavado, el fragmento de ADN puro se eluye en 20 µl de tampón Tris o en agua.

El sistema QIAEX II incluye una suspensión QIAEX II junto con tampones de unión y lavado y un manual de uso integral. Se proporcionan protocolos para la purificación de ADN a partir de geles de agarosa, soluciones y geles de poliacrilamida.

See figures

Applications

El ADN purificado con el sistema QIAEX II se puede utilizar directamente en la mayoría de las aplicaciones, incluyendo las indicadas a continuación:

  • Digestión de restricción
  • Marcado
  • Ligación
  • PCR

CaracterísticasEspecificaciones
Capacidad de unión5 µg/10 µl
Volumen de elución20 µl
FormatoTubo
Tamaño de fragmento40 bp–50 kb
ProcesamientoManual
Recuperación: ADNbc de oligonucleótidosRecuperación: fragmentos de ADNbc
Eliminación, proteínas de terminador de colorante, <10 mers 17–40 mersEliminación, <40 mers
Tipo de muestra: aplicacionesADN: Reacciones de PCR
TecnologíaTecnología de sílice

Supporting data and figures

Resources

Kit Handbooks (1)
Safety Data Sheets (1)
Quick-Start Protocols (1)
Certificates of Analysis (1)

Publications

T-B+NK+ severe combined immunodeficiency caused by complete deficiency of the CD3zeta subunit of the T-cell antigen receptor complex.
Roberts JL; Lauritsen JP; Cooney M; Parrott RE; Sajaroff EO; Win CM; Keller MD; Carpenter JH; Carabana J; Krangel MS; Sarzotti M; Zhong XP; Wiest DL; Buckley RH;
Blood; 2006; 109 (8):3198-206 2006 Dec 14 PMID:17170122
Role for nonstructural protein 1 of severe acute respiratory syndrome coronavirus in chemokine dysregulation.
Law AH; Lee DC; Cheung BK; Yim HC; Lau AS;
J Virol; 2006; 81 (1):416-22 2006 Oct 11 PMID:17035307
Effects of the chemotherapeutic agent doxorubicin on the protein C anticoagulant pathway.
Woodley-Cook J; Shin LY; Swystun L; Caruso S; Beaudin S; Liaw PC;
Mol Cancer Ther; 2006; 5 (12):3303-11 2006 Dec PMID:17172434
Exportin-5 orthologues are functionally divergent among species.
Shibata S; Sasaki M; Miki T; Shimamoto A; Furuichi Y; Katahira J; Yoneda Y;
Nucleic Acids Res; 2006; 34 (17):4711-21 2006 Sep 8 PMID:16963774

FAQ

I bound an 11 kb DNA fragment to a QIAquick column; is it completely lost?

Larger DNA fragments bind more tightly to the QIAquick columns. It is difficult to predict whether a DNA fragment larger than 10 kb can be efficiently recovered, because this depends on base composition as well as fragment size. If the fragment is only a few kb larger than the 10 kb limit, it can be helpful to heat the elution buffer EB to 60°C and let it incubate on the column for a few minutes before centrifuging. However, please note that it will become less likely to recover your sample the larger the fragment size is. As we cannot guarantee recovery of fragments larger than the maximum cutoff size, we do not recommend to purify such fragments using QIAquick Kits.

The QIAEX II Kit can be used to extract DNA fragments up to 50 kb from agarose or polyacrylamide gels.

 

FAQ ID -756
How can I improve ligation efficiency of DNA from a QIAEX II Gel Extraction Kit?
Assuming that the ligation conditions are correct, QIAEX II particle carryover may affect ligation efficiency. Under low salt conditions, enzymes may bind to QIAEX II particles, thus reducing enzymatic activity in the ligation reaction. To remove the particles, centrifuge the tube containing the DNA for 30 seconds before pipetting the DNA.
FAQ ID -141
Can I store agarose gel slices containing DNA for gel extraction at a later point?
Cut out the slice of agarose containing the DNA fragment of interest, and store it at 4oC in an Eppendorf tube sealed with Parafilm.
FAQ ID -313
Is it possible to isolate single stranded DNA (ssDNA) with the QIAEX II Kit from agarose or polyacrylamide gels?
Yes, single stranded DNA can be isolated from agarose or polyacrylamide gels using the QIAEX II Gel Extraction Kit.
FAQ ID -576
Why does my DNA sample float out of the slot when loading it onto an agarose gel?

DNA fragments purified with the QIAGEN DNA Cleanup Systems, i.e., the QIAquick PCR Purification Kit, the MinElute Reaction Cleanup Kit, the QIAEX II Gel Extraction Kit etc. may float out of the loading wells of agarose gels due to residual ethanol carried over from the wash step with Buffer PE (despite the addtition of glycerol-containing loading buffer).

Use either of the following options to remove residual ethanol from the eluate:

  • re-purify the sample using a QIAquick-, or MinElute column, or QIAEX II resin
  • incubate the eluate at 56°C for 10 min to evaporate the ethanol
  • dry down the sample in a vacuum centrifuge, and resuspend the pellet in a small volume of sterile water
FAQ ID -205
Is it possible to clean up a methylation reaction containing bisulfite with QIAquick Cleanup Kits?
Yes, bisulfite containing methylation reactions can be cleaned up with our silica-based cleanup products, such as QIAquick and QIAEX II. Please see Goyon et al. (1994),  'Perpetuation of cytosine methylation in Ascobolus immersus implies a novel type of maintenance methylase', published in J Mol Biol. 1994 Jul 1;240(1):42-51, for a reference.
FAQ ID -519
What is the small band below my fragment of interest on an agarose gel after DNA cleanup using QIAquick?

Occasionally, DNA fragments eluted from the silica matrix of QIAquick, MinElute or QIAEX II Kits will contain denatured single-stranded DNA (ssDNA), appearing as a smaller band on an analytical gel. Under certain conditions, chaotropic agents (present in all silica-based DNA purification methods) can denature DNA fragments. This is a rare event that may be influenced by sequence characteristics such as the presence of inverted repeats or A–T-rich stretches.

Because salt and buffering agents promote renaturation of DNA strands, the following tips are recommended:

  • use the eluted DNA to prepare your downstream enzymatic reaction, but omit the enzyme. Incubate the reaction mix at 95°C for 2 minutes to reanneal the ssDNA, and allow the tube to cool slowly to room temperature before adding the enzyme and proceeding
  • alternatively, the DNA can be eluted from the silica-gel membrane or resin in 10 mM Tris buffer containing 10 mM NaCl. However, the salt concentration of the eluate must then be taken into consideration in downstream applications.
FAQ ID -148
How can I extract DNA from a polyacrylamide (PAGE) gel?

The QIAEX II and QIAquick Gel Extraction Kit can be used to extract DNA from polyacrylamide gels.

The QIAEX II Handbook contains a protocol for Polyacrylamide Gel Extraction. A specialized User-Developed Protocol (QQ05) is available when using the QIAquick Gel Extraction Kit for this purpose.

Both protocols require the preparation of a diffusion buffer and a disposable plastic column or syringe barrel containing a Whatman GF/C filter or siliconized glass wool. To ensure optimal diffusion, cut the gel slices as small as possible, and use 2 volumes of diffusion buffer per 1 volume of gel. Increasing incubation time (protocol step 3) may result in higher yields.

FAQ ID -120
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